青海牦牛源益生菌分离、鉴定及其益生特性的研究

 

摘要:本研究旨在从青海省牦牛源样品中分离筛选可用于改善牦牛腹泻的潜在益生菌菌株,并评价其体外益生特性。试验首先从健康牦牛粪便和酸奶中分离纯化出乳酸菌,通过菌落形态观察、16S rDNA以及对部分菌株进行保守基因rpoA测序,并进行BLAST比对,对筛选菌株进行鉴定。然后,通过评价菌株的生长、耐酸、耐胆盐、自动聚集能力和疏水性等特性筛选出优异菌株,重点考察其对来自腹泻致死牦牛中分离的致病菌的抑制能力,同时对其抗生素耐药性、细胞黏附能力、抗氧化能力[2,2-二苯基-1-苦基肼(DPPH)自由基清除率、羟自由基清除率及还原能力]及抗炎能力[巨噬细胞释放一氧化氮(NO)]进行测定。结果表明:试验共获得8株乳酸菌,其中1株为罗伊氏黏液乳杆菌,3株为植物乳植杆菌,4株为屎肠球菌。其中,罗伊氏黏液乳杆菌 QM11具有较强的耐酸和耐胆盐能力;自动聚集率和疏水率分别为(64.07±1.36)%和(26.90±1.51)%;对牦牛源致病性大肠杆菌QH01、QH02和QH03的抑菌率分别为(87.29±0.98)%、( 74.67±1.28)%和(86.43±0.21)%,对金黄色葡萄球菌、单增李斯特菌和鼠伤寒沙门氏菌等多种病原指示菌的抑菌率达74%以上;对氨苄西林、青霉素、庆大霉素和链霉素等多种抗生素敏感。与对照菌株鼠李糖乳杆菌GG相比,罗伊氏黏液乳杆菌QMI1对结肠细胞的黏附能力更强,黏附率为(54.38±2.15)%;菌悬液的抗氧化能力更强,DPPH自由基清除率、羟自由基清除率和还原能力分别为(4.19±1.03)%、(180.29±9.28)%和(6.07±0.60)%;抑制巨噬细胞释放NO的能力与鼠李糖乳杆菌GG相当。综上所述,本试验筛选出的罗伊氏黏液乳杆菌QM11可作为后续研制用于防治牦牛腹泻益生菌制剂的备选菌株。

关键词:牦牛;益生菌;筛选;益生特性

牦牛是高原(海拔>3000m)特有的物种,能够在低温和缺氧的极端条件下生存。牦牛养殖是生活在高海拔地区人们重要的经济来源,也是当地牧民奶、肉制品和皮革的重要来源。犊牦牛由于肠胃道系统和免疫系统等还未发育成熟,受到气候、环境及病菌等因素的影响极易发生腹泻。其中,细菌、寄生虫和病毒等病原体感染会导致犊牛产生严重的腹泻症状,是犊牦牛腹泻的重要原因。目前,传统的抗生素治疗会加速细菌耐药性的产生,抗生素在肉制品中残留还会引起食品安全问题。随着我国对兽用抗菌药综合治理的高度重视,以及“养殖业减抗、禁抗、产品无抗”行动计划的加快实施,寻找新的方法预防和治疗犊牦牛腹泻及提高其生长性能迫在眉睫。

益生菌具有抗菌、改善肠道环境、降血脂、抗肿瘤以及参与免疫调节等生理作用,可通过增强肠道黏膜屏障功能、阻止病原菌黏附定植以及增强机体免疫反应来发挥作用。研究发现,嗜酸乳杆菌、枯草芽孢杆菌和酿酒酵母联合干预可促进犊牛生长发育,减轻炎症反应,促进肠黏膜功能恢复。罗伊氏黏液乳杆菌的发酵酸奶可减轻由产肠毒素大肠杆菌感染引起的小鼠氧化应激,并且降低产肠毒素大肠杆菌对肠上皮细胞的黏附。冯鸣鹊等从犊牛粪便中分离的乳酸菌对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌以及临床分离株大肠杆菌 K99具有抑菌活性。因此,筛选具有抗菌、抗炎功能的益生菌菌株,开发具有防治犊牦牛腹泻的益生菌制剂,对于犊牦牛的养殖生产具有重要意义。

本研究旨在通过从青海省牦牛源样品中分离乳酸菌,筛选耐酸、耐胆盐,具有较强肠道黏附性和抗氧化能力的益生菌菌株,并对其体外抑菌能力、抗炎能力及抗生素耐药性进行研究,为开发防治犊牦牛腹泻和有益其生长发育的益生菌制剂提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 试验材料

牦牛粪便采集于青海省果洛藏族自治州玛多县,牦牛品种为高原型牦牛,采集时间为2023年5-8月;牦牛酸奶为市售产品,主要配料为生牦牛乳、全脂乳粉和乳清蛋白粉,其营养成分见表1

表1牦牛酸奶营养成分

项目

含量/100g

营养参考值

项目

含量/100g

营养参考值

能量

2110kJ

25

烟酸

0.34mg

2

蛋白质

25.8g

43

泛酸

1.1mg

22

脂肪

29g

48

胆碱

50mg

11

多不饱和脂肪酸

0.7g

 

600mg

86

碳水化合物

25.2g

12

700mg

37

350mg

18

55mg

18

维生素A

150mg

19

900mg

113

维生素E

0.3μg

2

3mg

20

维生素B1

0.1mg

7

5μg

33

维生素B2

0.7mg

50

10mg

10

维生素B6

0.13mg

9

左旋肉碱

 

 

试验所用菌株鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosus) GG( ATCC53103)由中国工业微生物菌种保藏管理中心提供。病原指示菌:大肠杆菌( Escherichia coli) O157(ATCC32250)、志贺氏菌( Shigella castellani)(CICC10865)、鼠伤寒沙门氏菌( Salmonella typhimurium)(CMCC50115)、阪崎克罗诺杆菌(Cronobacter sakazaki )(ATCC29544)、单增李斯特菌(Listeria monocytogenes)(ATCC19115)和金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)为本实验室保藏菌种。大肠杆菌QH01(与GenBank登录号CP037903.1菌株相似性为99.33%)、大肠杆菌QH02(与GenBank登录号LR134081.1菌株相似性为99.89%)和大肠杆菌QH03(与GenBank登录号菌株OP755835.1相似性为99.67%)为因腹泻死亡的牦牛病料组织分离培养所得,其中大肠杆菌QH01 和QH02 的牦牛病料采集于青海省果洛州久治县,牦牛品种为高原型牦牛;大肠杆菌QH03的牦牛病料采集于青海省天峻县木里镇,牦牛品种为环湖型牦牛。

人结肠癌细胞HCT416和小鼠巨噬细胞RAW264.7为本实验室保藏细胞,使用含10%胎牛血清和1%青霉素、链霉素在37℃、5%二氧化碳(CO₂)下培养。

1.2 主要试剂与仪器设备

主要试剂:MRS肉汤、琼脂粉、猪胆盐和盐酸购自北京索莱宝科技有限公司,噻唑蓝(MTT)购自美国Sigma公司,二甲基亚砜(DMSO)购自生工生物工程(上海)股份有限公司,乙醇购自天津市江天化工技术股份有限公司,抗生素药敏纸片购自北京三药科技有限公司,DMEM培养基购自美国Gibco公司,一氧化氮检测试剂盒购自上海碧云天生物技术股份有限公司。

主要仪器设备:SPX-150型生化恒温培养箱,北京市永光明医疗仪器有限公司;SpectraMaxiD3型多功能酶标仪,美国Molecular Devices公司;SW-CJ-FD型净化工作台,上海沪净医疗器械有限公司;CT90A型全自动立式蒸汽灭菌器,上海伯能仪器有限公司;TY-80B型脱色摇床,常州润华电器有限公司。

1.3 菌株的分离纯化

将样品进行稀释,分别吸取100μL稀释液(10-4、10-5、10-6稀释梯度)均匀涂布于添加碳酸钙的MRS 固体平板,37℃培养48h,挑选产溶钙圈和具有乳酸菌形态的单菌落,将挑选的单菌落在MRS固体培养基上纯化3次后进行革兰氏染色。将分离得到的菌株进行16S rDNA(通用引物27F和1492R)测序;对部分菌株进行16S rDNA及保守基因rpoA测序,所用引物序列见表2,结果进行BLAST 比对分析。

表2引物序列

引物

序列(5'-3')

位点

27F

AGAGTTTGATCCTGGCTCAG

7

1492R

GGTTACCTTGTTACGACTT

1159

rpoA 21F

ATGATYGARTTTGAAAAACC

1

rpoA 23R

ACHGTRTTRATDCCDGCRCG

802

1.4 菌株生长曲线测定

将菌株接种于MRS液体培养基中,37℃静置培养 24 h,每2h取样,采用多功能酶标仪测定600 nm波长处吸光度(OD)值,绘制菌株的生长曲线。

1.5 菌株耐酸和耐胆盐能力测定

菌株的耐酸和耐胆盐能力的测定参照Liu等的方法。将菌体分别重悬于pH为2、3、4以及含0.1%、0.2%、0.3%胆盐的MRS液体培养基中,以正常生长状态下的菌液作为对照。采用多功能酶标仪测定490nm波长处OD值。存活率计算公式如下:

存活率(%)=100×试验组OD值/对照组OD值。

1.6 菌株自动聚集能力测定

菌株自动聚集能力的测定参考Polak-Berecka等的方法。将菌液以2654×g离心10min,收集菌体,用pH=7.2的无菌磷酸盐缓冲液(PBS)经过2次洗涤后重悬,调整菌悬液的600nm波长处OD值为(1.00±0.05),取菌悬液于室温静置6h,测定600 nm波长处OD值。自动聚集率计算公式如下:

自动聚集率(%) =100×(OD0-OD1) /OD0

式中:OD0为0h的OD值;0D1为静置6h的OD值。

1.7 菌株疏水性测定

菌株疏水性测定参照杜兰兰等的方法。将菌液以2 654×g离心10min,收集菌体,用PBS洗涤2次后重悬。调整菌悬液的600nm波长处OD值为(1.00±0.05),然后将3mL菌悬液与600μL的二甲苯混匀室温静置1h,取水相测定600nm波长处OD值。疏水率计算公式如下:

疏水率( %)=100×(OD0-OD1) /OD0

式中:OD0为0h的OD值;OD1为静置1h的OD值。

1.8 菌株抑菌能力测定

将乳酸菌和指示菌的菌悬液浓度调整至107CFU/mL,然后将乳酸菌分别与指示菌接种到液体MRS 培养基中,37℃共培养12h。将共培养后的菌悬液稀释涂布于LB固体培养基,37℃培养48 h,计数指示菌的活菌数,以单独培养的指示菌活菌数为对照组。抑菌率计算公式如下:

抑菌率( %)=100×(1-试验组菌液浓度/对照组菌液浓度)。

1.9 菌株抗生素耐药性测定

抗生素耐药性测定采用药敏纸片琼脂扩散法,取100 μL 108CFU/mL的菌液在MRS固体培养基表面涂布,将药敏纸片取出贴于培养基表面,37℃培养24h后,测量抑菌圈直径。

1.10 菌株对结肠细胞的黏附能力测定

黏附能力测定参照Liu等的方法。将HCT-16细胞以1×105个/mL接种至96孔板,待细胞生长至致密单层后,每孔加人107CFU菌液培养2 h后用PBS漂洗3次。采用MTT法分别测定PBS 漂洗后的OD值(OD1)、未漂洗的OD值(OD2)和未加菌液的对照组OD值(OD0)。黏附率计算公式如下:

黏附率(%) = 100×( 0D1-0D0) /( 0D2-0D0)。

1.11 菌株抗氧化能力测定

1.11.1 样品的制备

1)发酵上清液的制备:用蒸馏水调整菌体浓度为109CFU/mL,4 ℃、6796×g离心15min,收集发酵上清液。2)菌悬液的制备:离心后的菌体沉淀用 PBS 重悬洗涤,4 ℃、6796×g离心15 min,重复3次后将菌体重悬于PBS中,并调整菌体浓度至109CFU/mL。3)无菌体破碎物的制备:取上述菌悬液超声破碎,破碎后离心取上清,即为无菌体破碎物。同时,将鼠李糖乳杆菌GG按以上3种处理方式制备3种样品液作为对照。

1.11.2 2,2-二苯基-1-苦基肼(2,2-dipheny1-1-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除率、羟自由基清除率及还原能力测定

参照 Li 等的方法,测定乳酸菌发酵上清液、菌悬液和无菌体破碎物的DPPH自由基清除率;参照张月等的方法,测定乳酸菌发酵上清液、菌悬液和无菌体破碎物的羟自由基清除率;参照Chen等的方法,对乳酸菌发酵上清液、菌悬液和无菌体破碎物的还原能力进行测定。

1.12 RAW264.7细胞活力的测定

将乳酸菌的浓度调整成108CFU/mL,4 ℃、6796×g离心 15min后收集发酵上清液,冷冻干燥后用PBS溶解得到冻干发酵上清液。将RAW264.7细胞以1×105个/mL接种到96孔板,用不同浓度(0.2、0.4、0.8、1.6、3.2和6.4 mg/mL)的乳酸菌冻干发酵上清液37℃含5% CO2培养箱孵育2h后,加入0.1μg/mL脂多糖(LPS)后孵育24h。利用MTT法测定490nm波长处OD 值。

1.13 一氧化氮(NO)生成的测定

冻干发酵上清液预处理2h后,使用LPS( 0.1μg/mL)诱导RAW264.7细胞24h,收集细胞上清液。利用NO检测试剂盒测定NO的生成情况。

1.14 数据统计分析

试验数据结果表示为“平均值±标准差(mean±SD)”形式,每组试验重复3次。采用SPSS 27.0软件进行单因素方差分析(one-wayANOVA),并采用LSD法进行组间多重比较;采用GraphPad Prism8软件进行做图。P<0.05 表示差异显著。

2 结果与分析

2.1 分离菌株的形态和镜检

纯化后的菌株在MRS固体培养基上菌落形态较小,呈乳白色、圆形且边缘整齐。通过菌落形态、产溶钙圈和镜检,共筛选得到82株革兰氏阳性且产溶钙圈菌株,其中分离到3株罗伊氏黏液乳杆菌、15株植物乳植杆菌、42株屎肠球菌、8株芽孢杆菌和14株其他菌株。选取其中8株进行后续益生特性的研究。部分菌落形态和镜检结果见图1和图2。将测序结果进行BLAST比对分析,部分菌株的鉴定结果见表3.

img1

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表3牦牛源样品部分菌株的鉴定结果

菌株

菌株编号

GenBank登录号

相似性/%

罗伊氏黏液乳杆菌

QM11

MF461465.1

99.86

植物乳杆菌

ML01

KC836663.1

99.56

植物乳杆菌

MT08

MT544918.1

98.90

植物乳杆菌

MD05

JQ801725.1

99.44

屎肠球菌

QL05

CP034949.1

99.74

屎肠球菌

QL08

CP034949.1

99.48

屎肠球菌

QL10

CP034949.1

99.61

屎肠球菌

QL16

CP034949.1

99.48

2.2 菌株生长曲线

从图3可以看出,罗伊氏黏液乳杆菌QM11在2h后进入对数生长期,8~24h为稳定期,24 h时的600nm波长处OD值为1.2左右。3株植物乳植杆菌生长情况相似,接种4h后进入对数生长期,开始迅速生长;10h后进入稳定期,24h时的600 nm波长处OD值达到1.3左右。4株屎肠球菌中QL10和QL16的生长较缓慢,24h时的600 nm波长处OD值分别为0.92和0.76。

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图3 菌株生长黄线

2.3 菌株耐酸和耐胆盐能力

益生菌要能够适应胃酸的低pH和小肠胆盐的高渗透压环境才能在肠道中存活,因此本试验评价了菌株的耐酸和耐胆盐能力。8株乳酸菌在不同pH条件下的存活率如图4所示。当pH为2时,所有菌株的存活率较低,其中罗伊氏黏液乳杆菌QM11的存活率显著高于其他菌株(P<0.05),为(12.68±0.95)%。当pH为3时,3株植物乳植杆菌ML01、MT08和MD05的存活率分别为(49.32±3.60)%、(38.89±3.52)%和(39.85±3.35)%,显著高于其他菌株(P<0.05);而罗伊氏黏液乳杆菌QM11的存活率为(28.12±1.10)%。当pH为4时,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的存活率显著高于其他菌株(P<0.05),可达到(96.71±3.50)%,植物乳植杆菌ML01和MD05的存活率分别为(75.97±4.44)%和( 79.38±7.16)%;而 4 株屎肠球菌的存活率均在20%左右。结果表明,罗伊氏黏液乳杆菌QM11表现出较强的耐酸能力。

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图4 菌株耐酸能力

8株乳酸菌在不同胆盐浓度下的存活率见图5。其中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11经过0.1%的胆盐处理4h后,存活率达到(86.04±6.35)%,显著高于其他菌株(P<0.05);植物乳植杆菌ML01和MD05的存活率分别为(41.13%±9.34) %和(31.12±3.45)%;4株屎肠球菌的存活率在20%~30%。当胆盐浓度为0.2%时,所有菌株的生长都受到了影响,但QM11、ML01和MD05仍具有一定的耐受能力。当胆盐浓度为0.3%时,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的存活率显著高于除植物乳植杆菌MT08、MD05以及屎肠球菌QL16外的其他菌株(P<0.05),为(9.94±0.76)%。结果表明,罗伊氏黏液乳杆菌QM11表现出较强的耐胆盐能力。

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图5 菌株耐胆盐能力

2.4 菌株自动聚集能力和疏水性

细菌的自动聚集能力和表面疏水性与细菌的黏附性存在一定的相关性,自动聚集能力和疏水性越高,其黏附性越好。如图6所示,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的自动聚集率最高,可达(64.07±1.36)%,显著高于其他菌株(P<0.05);植物乳植杆菌ML01、MT08和MD05的自动聚集率相对较高,分别为(58.70±2.41)%、(58.29±2.48)%和(56.74±2.34)%;4株屎肠球菌的自动聚集能力较差,自动聚集率均在30%左右。

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图6 菌株自动聚集率

从图7可以看出,8株乳酸菌都具有一定的表面疏水性,但不同菌株表现出明显的差异性。其中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的疏水率显著高于其他菌株(P<0.05),为(26.90±1.51)%;植物乳植杆菌ML01、MT08和MD05疏水率次之,分别为(23.57±1.81)%、(12.00±2.04)%和(11.06±1.22)%;屎肠球菌QL05、QL08、QL10和QL16 的疏水率相对较差,分别为(6.51±1.19)%、( 7.10±1.71)%、(4.21±0.73)%和(8.90±0.22)%。综合来看,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的自动聚集能力和疏水性均显著高于其他菌株,表明其对肠道的黏附性能可能较强。

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2.5 菌株抑菌能力

选取腹泻致死牦牛来源的致病性大肠杆菌QH01和金黄色葡萄球菌对8株乳酸菌的抑菌能力进行评价,结果如表4所示,8株乳酸菌对大肠杆菌QH01的抑菌率均在60%以上,其中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的抑菌率可达到(86.46±1.13)%;屎肠球菌QL16对大肠杆菌QH01的抑菌率较差,为(60.92±1.29)%。8株乳酸菌对金黄色葡萄球菌具有较好的抑菌能力,抑菌率均在75%以上。由此可见,罗伊氏黏液乳杆菌QM11对大肠杆菌QH01和金黄色葡萄球菌的抑菌率均在85%以上,因此进一步利用9种致病菌对其抑菌能力进行研究。

表4不同菌株的抑菌能力

菌株编号

抑菌率/%

菌株编号

抑菌率/%

大肠杆菌QH01

金黄色葡萄球菌

大肠杆菌QH01

金黄色葡萄球菌

QM11

86.46±1.13

85.77±1.35

QL05

80.52±0.36

85.34±1.55

ML01

71.34±0.94

87.74±0.45

QL08

71.11±1.42

81.35±1.65

MT08

74.53±0.93

77.14±1.37

QL10

71.23±0.90

82.14±0.82

MD05

83.46±1.12

75.32±0.94

QL16

60.92±1.29

77.24±0.94

由表5可知,罗伊氏黏液乳杆菌QM11对9种致病菌均有明显的抑制效果,其对志贺氏菌和单增李斯特菌的抑菌率高达90%以上,对大肠杆菌0157、QH03以及阪崎克罗诺杆菌等的抑菌率为85.68%~89.21%,对大肠杆菌QH02和鼠伤寒沙门氏菌的抑菌率为74%左右。

表5罗伊氏黏液乳杆菌QM11的抑菌能力

指示菌

抑菌率/%

指示菌

抑菌率/%

大肠杆菌O157

89.21±0.62

志贺氏菌

97.05±0.41

大肠杆菌QH01

87.29±0.98

鼠伤寒沙门氏菌

74.29±1.88

大肠杆菌QH02

74.67±1.28

孤崎克罗诺杆菌

85.68±1.09

大肠杆菌QH03

86.43±0.21

金黄色葡萄球菌

87.85±1.16

单增李斯特菌

91.95±0.50

 

 

2.6 菌株抗生素耐药性

罗伊氏黏液乳杆菌QM11对16种常见抗生素的耐药性见表6,其对氨苄西林、青霉素、庆大霉素、链霉素、四环素、氯霉素、呋喃妥因、头孢噻吩、万古霉素、头孢他啶和卡那霉素敏感,对氨曲南中度敏感,对苯唑西林、诺氟沙星、环丙沙星和左氧氟沙星耐药。

表6罗伊氏黏液乳杆菌QM11的抗生素耐药性

抗生素

含量/片

抑菌圈直径/mm

敏感性

抗生素

含量/片

抑菌圈直径/mm

敏感性

氨苄西林

10μg

44.58±0.75

S

诺氟沙星

10μg

0.00±0.00

R

苯唑西林

1μg

0.00±0.00

R

头孢噻吩

30μg

40.40±1.08

S

青霉素

10IU

32.50±1.03

S

万古霉素

50μg

35.15±1.37

S

庆大霉素

10μg

32.79±1.48

S

环丙沙星

5μg

0.00±0.00

R

链霉素

10μg

27.74±1.95

S

左氧氟沙星

5μg

0.00±0.00

R

四环素

30μg

36.85±1.27

S

氨曲南

30μg

20.36±0.84

I

氯霉素

30μg

39.78±0.51

S

头孢他啶

30μg

29.82±1.09

S

呋喃妥因

300μg

40.61±2.86

S

卡那霉素

30μg

23.77±2.00

S

S:敏感; I:中度敏感;R:耐药。

2.7 菌株对结肠细胞的黏附能力

益生菌对宿主肠黏膜的黏附能力是筛选具有应用潜力益生菌的首要标准,因此为了进一步探究罗伊氏黏液乳杆菌OM11对肠上皮细胞的黏附能力,利用HCT-416细胞测定了菌株对细胞的黏附能力,结果见图8。罗伊氏黏液乳杆菌QM11的黏附率为(54.38±2.15)%,显著高于对照菌株鼠李糖乳杆菌GG(P<0.05)。

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2.8 菌株抗氧化能力

由表7可知,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的发酵上清液、菌悬液和无菌体破碎物均具有DPPH自由基清除能力、羟自由基清除能力和还原能力。其中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的无菌体破碎物DPPH自由基清除率为(38.57±8.16)%,显著高于鼠李糖乳杆菌GG(P<0.05);发酵上清液的羟自由基清除率为(37.97±2.28)%,显著低于鼠李糖乳杆菌GG(P<0.05);而菌悬液的羟自由基清除率和还原能力分别为(180.29±9.28) %和(6.07±0.60)%,显著高于鼠李糖乳杆菌GG(P<0.05)。综合以上3个抗氧化能力指标的结果,罗伊氏黏液乳杆菌QM11具有良好的抗氧化能力。

表7菌株抗氧化能力(%)

菌株

处理方式

DPPH自由基清除率

羟自由基清除率

还原能力

罗伊氏黏液乳杆菌QM11

发酵上清液

89.42±0.75

37.97±2.28b

16.73±1.47

菌悬液

4.19±1.03

180.29±9.28a

6.07±0.60a

无菌体破碎物

38.57±8.16a

95.57±2.91

3.63±1.62

鼠李糖乳杆菌GG

发酵上清液

89.25±1.19

92.58±0.06a

15.77±1.25

菌悬液

2.83±0.95

92.31±0.96b

1.47±0.42b

无菌体破碎物

15.62±2.75b

99.80±4.71

-

“-”表示清除率较低(<0.5%)。不同字母代表不同菌株相同处理方式差异显著(P<0.05)。

2.9 菌株对LPS诱导RAW264.7细胞NO生成的影响

本试验首先评价了菌株发酵上清液对RAW264.7细胞活力的影响,结果如图9所示,不同浓度(0.2~6.4mg/mL)的发酵上清液对细胞活力均没有显著影响(P>0.05)。然后,为进一步评价菌株罗伊氏黏液乳杆菌QM11的抗炎能力,本试验建立了LPS诱导的RAW264.7细胞产生NO模型,结果如图10所示。与对照组相比,LPS组NO含量显著提高(P<0.05);与LPS组相比,不同浓度的罗伊氏黏液乳杆菌QM11发酵上清液均可显著降低NO含量(P<0.05),且高浓度的罗伊氏黏液乳杆菌QM11发酵上清液表现出更强的抗炎能力。结果表明,罗伊氏黏液乳杆菌QM11可降低LPS诱导RAW264.7细胞NO的产生,具有一定的抗炎能力,与鼠李糖乳杆菌GG相似。

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图10菌株对LPS诱导RAW264.7细胞NO生成的影响

3 讨论

益生菌具有抗毒素、抗致病菌和防治腹泻的作用,能够改善肠道菌群平衡,促进营养物质的消化吸收,提高宿主免疫力。益生菌能够改善反刍动物瘤胃发酵状况,从而提高反刍动物的干物质采食量、饲料利用效率和体增重。不过,菌株发挥益生特性可能存在物种差异性,外源益生菌可能无法在肠道内定植,而从动物肠道或粪便中分离的益生菌可在其肠道内定植并发挥益生功能,所以用于生产畜禽用益生菌的微生物制剂通常从相应的动物个体中分离。本文从青海省果洛藏族自治州健康牦牛粪便和酸奶中分离纯化出乳酸菌,通过菌落形态观察、16S rDNA以及对部分菌株进行保守基因rpoA测序分析,获得1株罗伊氏黏液乳杆菌、3株植物乳植杆菌和4株屎肠球菌,并对其益生特性进行研究。

益生菌能进人胃肠道发挥益生功能的前提是具有对胃酸和胆盐环境的耐受能力,胃液的pH和小肠中的胆汁浓度通常为3.0左右和0.1%~0.3%。本研究中,8株乳酸菌都能在pH2.0~4.0、胆盐浓度0.1%~0.3%的条件下生长,其中罗伊氏黏液乳杆菌QM11以及植物乳植杆菌ML01和MD05有较高的存活率。细菌的黏附能力是益生菌选择的重要标准,确定细菌的黏附性对于益生菌的研究有重大意义。本文通过测定菌株的自动聚集率和表面疏水性筛选具有黏附性质的益生菌,结果发现,罗伊氏黏液乳杆菌QM11在6 h时的自动聚集率为(64.07±1.36)%,3株植物乳植杆菌的自动聚集率为56.74%~58.70%。訾静等研究发现,乳杆菌和肠球菌在6h时的自动聚集率为50.9%~56.8%,与本试验结果相似。杜兰兰等研究表明,鼠李糖乳杆菌GG的疏水率为(9.85±1.25)%。本研究中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的疏水率为(26.90±1.51)%,与上述研究结果相比具有更强的疏水性。结合自动聚集能力和疏水性结果来看,罗伊氏黏液乳杆菌QM11可能对肠道的黏附能力更强。冯鸣鹊等研究犊牛源乳酸菌12号菌株对结肠细胞的黏附率为17.5%,而本试验中罗伊氏黏液乳杆菌QM11对结肠细胞HCT-416 的黏附率约为54.38%。

腹泻是犊牦牛的常见疾病,威胁牦牛健康,降低其生产力、产奶量和繁殖能力;在怀孕牦牛分娩前发生腹泻,还会导致犊牛营养不良甚至死亡。细菌性疾病引起的腹泻大多由大肠杆菌、沙门氏菌、弯曲杆菌和产气荚膜梭菌造成,其中大肠杆菌是导致腹泻的主要致病菌。犊牦牛的大肠杆菌病为严重急性肠道传染病,患病犊牦牛会出现严重腹泻、脱水、急性败血症甚至引发死亡。Liu等研究发现,未饲喂益生菌的犊牛腹泻率达39%,补充乳酸菌或酵母以及二者组成的复合益生菌后,与对照组相比,腹泻率分别降低了11%、13%和 17%。研究表明,乳酸菌发挥益生功能的重要机制之一是抑制肠道病原菌。本研究选取的大肠杆菌QH01、QH02和QH03是从牦牛病料组织中分离获得,通过前期的分子生物学鉴定和实验动物致死试验证实,均为致病性大肠杆菌。本研究中,8株乳酸菌对大肠杆菌QH01的抑菌率均在60%以上,对金黄色葡萄球菌的抑菌率达到75%以上,其中罗伊氏黏液乳杆菌QM11的抑菌能力更优,对3株牦牛源致病性大肠杆菌的抑菌率在74.67%~87.29%,并且对单增李斯特菌、阪崎克罗诺杆菌和鼠伤寒沙门氏菌等9种致病菌均有抑制作用。同时,罗伊氏黏液乳杆菌QM11对多数常见抗生素无耐药性,可认为是安全菌株,对宿主健康不会产生损害。

DPPH自由基、羟自由基清除能力和还原能力是评价益生菌抗氧化能力的常见指标。本研究中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11的发酵上清液、菌悬液和无菌体破碎物都具有抗氧化能力。陈楠等对多种益生菌抗氧化能力进行评价,其中粪肠球菌ZJUIDS-D016和融合魏斯氏菌ZJUIDS-D034的抗氧化能力较高,这2株菌的发酵上清液DPPH自由基清除率分别为86.21%和89.47%,羟自由基清除率分别为4.41%和32.32%。本研究中,罗伊氏黏液乳杆菌QM11发酵上清液的DPPH自由基清除率为(89.42±0.75)%,发酵上清液的羟自由基清除率为(37.97±2.28)%,菌悬液的羟自由基清除率高达(180.29±9.28)%。

炎症是免疫系统的一种适应性反应,在宿主防御系统中起着核心作用,可平衡体内稳态;而过度的炎症会引起如癌症、哮喘、动脉粥样硬化以及糖尿病等多种疾病的发生。LPS可与细胞膜表面Toll样受体4结合.刺激巨噬细胞产生炎症因子和炎症介质;LPS诱导的RAW264.7细胞常用于评价样品的体外抗炎活性。张金兰等将鼠李糖乳杆菌GG与枸杞果汁进行发酵,发酵提取物与未发酵提取物相比NO生成量显著降低。米洁兰等通过LPS和尼日利亚菌素诱导的急性炎症巨噬细胞模型筛选出一株具有抗炎、抗感染的免疫调节活性的益生菌Lac.5。本研究通过LPS诱导巨噬细胞RAW264.7模拟体外炎症微环境,结果表明罗伊氏黏液乳杆菌QM11可降低LPS诱导RAW264.7细胞NO的产生,这与刘奕彤等的研究结果类似。

4 结论

本研究从青海健康牦牛粪便中分离出一株罗伊氏黏液乳杆菌QM11,其具有较强的酸和胆盐耐受性,对肠道具有较好的黏附性,且具有较好的抗氧化、抗炎能力以及对多种致病菌有一定的抑制作用,有望应用于牦牛腹泻的预防和治疗,为后期研制抗牦牛腹泻的益生菌制剂提供了参考菌株和理论依据。

参考文献:略。

作者:谢林林,曹瑾等2025-01-08网络首发于《动物营养学报》。